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RNA Pull Down實驗流程
使用體外轉(zhuǎn)錄法標記生物素RNA探針，然后與胞漿蛋白提取液孵育，形成RNA-蛋白質(zhì)復合物。該復合物可與鏈霉親和素標記的磁珠結(jié)合，從而與孵育液中的其他成分分離。復合物洗脫后，通過western blot實驗檢測特定的RNA結(jié)合蛋白是否與RNA相互作用。 蛋白質(zhì)與RNA的相互作用是許多細胞功能的核心，如蛋白質(zhì)合成、mRNA組裝、病毒復制、細胞發(fā)育調(diào)控等。若待檢測目的蛋白明確，選擇Western blot鑒定；若不明確，則可選擇質(zhì)譜鑒定。
RNA pull-down是檢測RNA結(jié)合蛋白與其靶RNA之間相互作用的主要實驗手段之一。RNA pull-down使用體外轉(zhuǎn)錄法標記生物素RNA探針，然后與胞漿蛋白提取液孵育，形成RNA-蛋白質(zhì)復合物。該復合物可與鏈親和素標記的磁珠結(jié)合，從而與孵育液中的其他成分分離。復合物洗脫后，通過Western Blot實驗檢測特定的RNA結(jié)合蛋白是否與RNA相互作用。
1) lncRNA篩選：
通過lncRNA芯片或RNA測序等方法對多對疾病模型和對照樣本組織進行l(wèi)ncRNA表達譜分析；
通過生物信息學的方法篩選出具有表達差異的lncRNA，構(gòu)建共表達網(wǎng)絡(luò)，預(yù)測lncRNA的靶基因；
通過PCR或Northern Blot技術(shù)對候選lncRNA驗證，確定其表達差異。
2) lncRNA確定：
通過5' RACE獲取lncRNA 5'全長，3' RACE獲取lncRNA3'全長，zui終拿到完整的lncRNA序列。
3) 表達分析：
細胞水平表達：在細胞水平進行檢測表達差異。 組織分布：檢測不同組織、不同階段表達特性。
表達水平動力學變化：比較不同處理條件下，如藥物處理、誘導處理下，表達水平差異。
4) 功能研究：
功能獲得性研究：構(gòu)建lncRNA過表達載體:原則上是將全長lncRNA定向克隆到表達載體上實現(xiàn)lncRNA的過表達。然而有些lncRNA很大或全長尚未分離，這時將視lncRNA在基因組上的定位采取不同的研究策略。
功能缺失性研究：可通過siRNA、shRNA、反義核酸等方法沉默lncRNA，干預(yù)lncRNA后檢測其對疾病相關(guān)基因表達的影響和對細胞表型如增值、凋亡、侵襲、轉(zhuǎn)移等的影響；
采用RNA pull down、RNA-RIP(RNA Binding Protein Immunoprecipitation)、ChIRP-seq(Chromatin Isolation by RNA Purification)等方法檢測與lncRNA結(jié)合的DNA、RNA、蛋白質(zhì)。
采用lncRNA芯片分析技術(shù)結(jié)合mRNA對lncRNA功能進行預(yù)測，研究lncRNA trans和cis作用機制。
采用配體指數(shù)級富集系統(tǒng)進化技術(shù)(systematic evolution of ligands by exponential enrichment，SELEX)，設(shè)計一種RNA配體，與癌癥相關(guān)的lincRNA結(jié)合達到抑制腫瘤細胞的生長和轉(zhuǎn)移。
采用快速預(yù)測RNA與蛋白質(zhì)相互作用與結(jié)構(gòu)域（catRAPID）在線算法來預(yù)測RNA與蛋白質(zhì)的相互作用，該算法根據(jù)RNA和蛋白質(zhì)的二級結(jié)構(gòu)、氫鍵和分子作用力來評估它們之間的相互作用的傾向。
采用非編碼RNA沉默和定位分析（c-KLAN）技術(shù)對lncRNA進行功能缺失
（Loss-of-function）研究和細胞定位，該技術(shù)是在基于核糖核酸內(nèi)切酶制備的小干擾RNA（esiRNA）和熒光原位雜交（FISH）2種現(xiàn)有的研究方法的基礎(chǔ)上建立起來的。
5) 表達調(diào)控：將lncRNA表達與其他領(lǐng)域相結(jié)合，解釋lncRNA調(diào)控機理。 DNA甲基化：可通過檢測相應(yīng)基因甲基化差異與lncRNA結(jié)合分析。 轉(zhuǎn)錄因子：研究lncRNA與轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控機制。 染色質(zhì)重塑：lncRNA表觀調(diào)控。 一.質(zhì)粒轉(zhuǎn)化、涂板、搖菌
1.取JM109感受態(tài)細菌80µl，加入1.5mlEP管中，用10µl槍頭沾取質(zhì)粒加入上述EP管中，混勻。
2.冰上靜置30min。
3.42℃熱休克90-120s。
4.迅速移至冰上靜置2min。
5.在超凈臺內(nèi)，于上述EP管中加入50µlLB培養(yǎng)基（Amp－），37℃，160rpm搖床，增菌0.5-1h。
6.菌液4,000rpm離心10min，棄大部分上清，將沉淀重懸，菌液全部加入LB平板（Amp+）上，涂布均勻，37℃倒置培養(yǎng)（過夜12-15h）。
7.將37℃培養(yǎng)（12-16h）平板取出，于無菌操作臺中挑取單克隆放入內(nèi)含5mlLB培養(yǎng)基（Amp+）的15ml離心管中，于37℃、250rpm搖床增菌過夜18H,看菌液是否渾濁。菌液渾濁后進行質(zhì)粒中提。
二.質(zhì)粒中提（TIANGEN，DP107-02）
1.柱平衡：向吸附柱CP3中（吸附柱放入收集管中）加入500µl的平衡液BL，12,000rpm離心1min，盡量吸除上清。
2.取1.5ml過夜培養(yǎng)的菌液，加入離心管中，使用常規(guī)臺式離心機，12,000rpm離心1min，盡量吸除上清。
3.向留有菌體沉淀的離心管中加入250µl溶液P1使用移液器*細菌沉淀。
4.向離心管中加入250µl溶液P2，溫和的上下翻轉(zhuǎn)6-8次使菌體充分裂解。
5.向離心管中加入350µl溶液P3，立即溫和的上下翻轉(zhuǎn)6-8次，充分混勻，此時將出現(xiàn)白色絮狀沉淀，12,000rpm，離心10min，此時在離心管底部形成沉淀。
6.將上一步收集的上清液用移液器轉(zhuǎn)移到吸附柱CP3中，12,000rpm，離心30-60sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP3放入收集管中。
7.向吸附柱CP3中加入500µl去蛋白液PD，12,000rpm離心，離心30-60sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP3重新放回收集管中。
8.向吸附柱CP3中加入600µl去蛋白液PW，12,000rpm離心，離心30-60sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CP3重新放回收集管中。重復一次。
9.將吸附柱CP3重新放回收集管中，12000rpm離心2min。
10.將吸附柱CP3置于一個干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位滴加50µl洗脫緩沖液EB，室溫放置2min，12,000rpm離心2min，將質(zhì)粒溶液收集到離心管中，放冰盒，測濃度。
三.質(zhì)粒線性化：
本實驗使用的酶為Biolabs的重組酶KpnⅠ。 酶切后進行跑膠。
四.瓊脂糖凝膠電泳
1.配膠。成分：瓊脂糖粉、TBE、ⅠH2O，少量EB。
2.TBE與H2O混合加入放好瓊脂糖粉的錐形瓶中，搖勻，放入微波爐加熱1-2min。
3.滴加少量EB，于錐形瓶中搖勻。
4.倒入膠板中，插入梳子，待瓊脂糖凝固。
5.小心拔掉梳子，取10µl樣品加入1µl的10×LoadingBuffer緩緩加入點樣孔，并在zui右邊的點樣孔加5µlDNAmaker。
6.接通電源。
7.電泳完畢，關(guān)閉電源。從膠模中取出瓊脂糖凝膠，于紫外燈下切下目的條帶。
五.膠回收（TIANGEN，DP214-02）
1.向吸附柱CB2中加入500µl平衡液BL，12,000rpm離心1min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱重新放回收集管中。
2.將單一的目的DNA條帶從瓊脂糖凝膠中切下放入干凈的離心管中，稱取重量。
3.向膠塊中加入等倍體積溶液PC，50℃水浴放置10min左右，其間不斷的上下翻轉(zhuǎn)離心管，以確保膠塊充分溶解。
4.將上一步所得溶液加入一個吸附柱CB2中12,000rpm離心1min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CB2放入收集管中。
5.向吸附柱CB2中加入600µl漂洗液PW，12,000rpm離心1min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CB2放入收集管中。
6.重復操作步驟⑤。
7.將吸附柱CB2放入收集管中，12,000rpm離心2min，盡量除去漂洗液。將吸附柱置于室溫放置數(shù)分鐘，*晾干。
8.將吸附柱CB2放入一個干凈的離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加適量的洗脫緩沖液EB，室溫放置2min，12,000rpm離心2min，收集DNA溶液。
六.轉(zhuǎn)錄以及生物素標記：
1.取無RNA酶管，按下表操作：
2.取出孵育好的EP管，加入2µl的DNaseⅠ，37℃孵育15min以除去體系中的DNA。
3.取出上述操作的EP管，加入2µl0.2MEDTA（pH=8.0）終止反應(yīng)。
4.取1µgBiotin標記的RNA，加入適量StructureBuffer,使得RNA形成二級結(jié)構(gòu)。然后將RNA95℃加熱2min，冰浴3min，室溫靜置30min。
5.磁珠準備：使用RIPWashBuffer500µl沖洗磁珠3次。
6.用50µlRIPWashBuffer重懸磁珠，然后將其加入到生物素標記并變性的RNA中，4℃過夜。
7.過夜的混合物3000rpm離心1min，去上清。
8.RIPWashBuffer沖洗3次，切記將液體沿壁加入或者滴加，上下緩慢翻轉(zhuǎn)混勻，切勿用移液器吹打。
9.往磁珠-RNA混合物中加入細胞裂解液，裂解液中加入適量RNase抑制劑，室溫放置1h。
10.將孵育好的磁珠-RNA-蛋白混合物低速離心，上清回收，使用RIPWashBuffer沖洗3次，1次1ml。
11.于樣品中加5×SDS上樣緩沖液，95℃變性10min，跑SDS-PAGE凝膠。
12.考染：取出SDS-PAGE凝膠于考馬斯亮藍染色液中，搖床過夜。次日用考馬斯亮藍脫色液脫色1~2h，中間更換幾次脫色液至條帶清晰，背景低為止。 13.將目的條帶切下送測序(質(zhì)譜檢測)。
問題1：RNA降解
可能原因：
1）無核酸酶的環(huán)境被破壞
2）體外轉(zhuǎn)錄的RNA探針降解
解決辦法：
1）清洗和使用新開的離心管和試劑等
2）RNA探針合成后，電泳檢測其長度和濃度
問題2：RNA結(jié)合蛋白的親和力不夠：
可能原因：
1）結(jié)合緩沖環(huán)境沒有優(yōu)化
2）裂解不*
3）磁珠用量不足
4）RNA探針用量不足
解決辦法：
問題3：RNA結(jié)合蛋白沒有結(jié)合
可能原因：
1）靶蛋白量不足
2）緩沖體系不對
3）RNA探針和蛋白的親和力本來就低
解決辦法：
問題4：結(jié)合的非特異性高
可能原因：
1）緩沖環(huán)境沒有優(yōu)化
2）緩沖環(huán)境嚴謹性低
3）樣品沒有裂解*和裂解體系沒有優(yōu)化
解決方法：
1）優(yōu)化孵育時間溫度鹽濃度等條件
2）使用嚴謹性高的緩沖體系
3）調(diào)低RNA探針和樣品的比例
4）提高裂解液的量
問題5：WB信噪比高
可能原因：
1）陽性信號率低
2）一抗效率低
3）蛋白沒有充分溶解
解決方法：
1）增加二抗的量
2）用敏感度的化學發(fā)光液
3）用細胞裂解液預(yù)孵一抗
4）增加樣品的量
5）確定有沒有其他可能的結(jié)合情況
6）增加裂解液用量
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