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1. 感染預實驗
以 24 孔培養(yǎng)板為例，同時進行目的細胞和工具細胞的感染預實驗。工具細胞可選擇 293T（人胚腎上皮細胞）、H1299（人肺癌細胞）或其它細胞。實驗材料：培養(yǎng)基、24 孔培養(yǎng)板，移液槍，槍頭， EP 管，細胞計數板、冰盒、廢液缸等。（根據目的細胞情況，可酌情使用 Polybrene）
Day1：
準備細胞：培養(yǎng)細胞至對數生長期，細胞以胰酶消化計數后，用細胞計數測出細胞密度，每孔接種 5×104 個細胞，添加細胞培養(yǎng)液至 500µL。通常情況下，該接種量的 H1299 或 293T 細胞在感染后第 3 天可生長至 80%-90% 融合度。（接種目的細胞時，請根據細胞的實際生長速度調整接種量，使目的細胞感染后第 3 天生長至 80%-90% 融合度）
Day2：
（1）準備慢病毒顆粒：計算所需慢病毒顆粒的量，將凍存在 -80℃ 的慢病毒顆粒取出，冰浴融化；
（2）感染目的細胞：從培養(yǎng)箱中拿出細胞，置于顯微鏡下觀察細胞生長狀態(tài)及細胞融合度；如細胞狀態(tài)較好，則開始實驗：
A. 用移液槍小心吸去 24 孔板中的舊培養(yǎng)液，加入新的*培養(yǎng)液；
B. 在細胞中分別加入計算好的慢病毒顆粒液，將培養(yǎng)板平置于工作臺上，以劃 8 字的方式輕柔混勻；
C. 混勻后，細胞培養(yǎng)板置于 37℃、5% CO2 培養(yǎng)箱，過夜培養(yǎng)。
Day3：
更換培養(yǎng)液：感染 12-16 小時后，吸出含慢病毒顆粒的培養(yǎng)液，重新向培養(yǎng)板添加含 5% 滅活 FBS（胎牛血清）的培養(yǎng)液，繼續(xù)培養(yǎng)。（目的細胞需要調整感染時長，部分細胞不可感染超過 12 小時。）
Day4：
繼續(xù)培養(yǎng)細胞，觀察細胞狀態(tài)是否有異常。
Day5：
觀察（評估）慢病毒顆粒感染效率：蓋緊 24 孔培養(yǎng)板，使用 70% 乙醇清理培養(yǎng)板外壁，在倒置熒光顯微鏡觀察熒光，拍照并估計慢病毒顆粒對細胞的感染效率。（如果慢病毒顆粒攜帶的基因表達所需的時間較長，熒光表達所需時間也較長，建議感染 72、96 小時后觀測熒光表達。）
根據熒光情況，可以初步從 MOI 梯度摸索實驗中，找出目的細胞的 MOI 值。
圖 1. H1299 細胞的 MOI 梯度摸索結果示例
示例中使用的慢病毒顆粒是 LPP-eGFP-Lv105（滴度 1×10 8TU/mL），曝光時間 1s，顯微倍數 100×。從上圖可見第 2 組細胞的感染效率已達到 90%。由于慢病毒顆粒對細胞有一定毒性，當 MOI 值過高時，繼續(xù)添加慢病毒顆粒，感染效率沒有明顯增加，且細胞狀態(tài)容易變差、皺縮甚至死亡。
熒光報告基因和目的基因的相對表達并不總是成等比關系的。在有的情況下，即使熒光報告基因表達較低或無表達，目的基因依然能夠表達；反之亦然。所以在觀察熒光效果后，建議使用 qRT-PCR 作進一步鑒定。
圖 2. 293T 細胞的 MOI 梯度摸索結果示例
示例中使用的慢病毒顆粒是 LPP-eGFP-Lv105（滴度 1×108TU/mL），曝光時間 0.6s，顯微倍數 100×。從上圖可見第 2 組細胞的感染效率已達到 80%。由于慢病毒顆粒對細胞有一定毒性，當 MOI 值過高時，繼續(xù)添加慢病毒顆粒，感染效率沒有明顯增加，且細胞狀態(tài)容易變差、皺縮甚至死亡。
2. 摸索細胞的zui適藥物篩選濃度
細胞的種類與狀態(tài)均會影響慢病毒顆粒轉導效率，部分細胞可能與慢病毒顆粒有相互抵抗的現(xiàn)象，導致感染效率低。當您在感染后 72、96 小時后發(fā)現(xiàn)感染效果仍不理想，建議對感染后的細胞進行藥物篩選（藥篩），以收集較多感染成功的細胞。
慢病毒顆粒攜帶的基因整合到目的細胞基因組是隨機發(fā)生的非同源性重組，當抗性基因表達時，目的基因不一定也能表達，在進行藥篩處理后，還要以 qRT-PCR 作進一步鑒定。
在進行正式的抗生素篩選前，建議您先對空白細胞的zui小致死濃度進行摸索、優(yōu)化。
表 4. 抗生素篩選細胞的相關參考值
以 293T 細胞+Puromycin 為例，從相關文獻查得 Puromycin 對 293T 細胞的zui小致死濃度為 2 µg/mL。在 2 µg/mL 附件多設置幾個濃度梯度，可以得出較的的篩選濃度。
（1）準備 24 孔培養(yǎng)板，按每孔 1-5×104 細胞數 (約等于 20%-35% 融合度) 接種 293T 空白細胞，對其中 6 個孔進行鋪板；
（2）一般 Puromycin 母液的濃度是 10 mg/mL，用細胞培養(yǎng)基將 Puromycin 母液稀釋 1000 倍，可獲得終濃度為 10 µg/mL 的 Puromycin 稀釋液；
（3）按表 5 所示，每孔添加相應的細胞培養(yǎng)基和 Puromycin；
（4）24 孔培養(yǎng)板置于 37℃、5% CO2 培養(yǎng)箱，培養(yǎng)過夜；
（5）按表 4 的藥篩時間和觀察時間建議，定期在熒光顯微鏡下觀察細胞狀態(tài)。
當空白細胞剛好能全部死亡時，該濃度的抗生素可作為zui適藥篩濃度。
表 5. 藥物篩選濃度梯度參考（Puromycin）
* 表格中使用的 Puromycin 濃度為 10 µg/mL，是由 10 mg/mL 的 Puromycin 母液以細胞培養(yǎng)液稀釋 1000 倍所得。
注：以上表格的設置僅供參考。通常即使細胞一樣，由于培養(yǎng)的條件和傳代次數不一樣，篩選濃度亦不一樣。可根據試驗結果進行更進一步的細化濃度梯度設置。 如果藥篩過程中細胞量較少，為保持細胞的數一定，一般不換液，只有在穩(wěn)轉株藥篩過程中，根據細胞生長速度，3-4 天換液一次。
如果目的細胞較難感染，一次感染不能達到預期效果時，在感染 3 天后可對目的細胞進行藥篩處理，獲得較多被感染的細胞，如以下例子所示：
圖 3. 人食管癌細胞 CE-81T（貼壁細胞）的藥篩前后效果對比
圖 4. 人骨肉瘤細胞 Hos（貼壁細胞）的藥篩前后效果對比
圖 5. 人白血病 K562（懸浮細胞）的藥篩前后效果對比
附：細胞融合度參考
圖 6. 293T 細胞在不同融合度的明視野效果（放大倍數：100×）
3. 實驗體系的放大和正式實驗
根據預實驗結果，放大慢病毒顆粒細胞感染實驗，實施正式實驗。
通過慢病毒顆粒感染細胞的預實驗，我們大致獲得慢病毒顆粒感染目的細胞的優(yōu)化條件。正式實驗所用的細胞數往往比預實驗多，慢病毒顆粒用量也需要適當放大。放大原則是保持細胞密度一致，按實際細胞數與預實驗細胞數的比例放大培養(yǎng)液體積和慢病毒顆粒用量。有兩種放大方法可供參考：
按底面積放大（適用于貼壁細胞）
當細胞的密度不變時，細胞總數和底面積成正比，且 MOI 不變，所需慢病毒顆粒用量也和底面積成正比。假設預實驗使用 96 孔板（底面積 0.3 cm2），使用 1 μL 慢病毒顆粒（滴度 1×108 TU/mL）可成功感染細胞；如正式實驗使用 6 孔板（底面積 10 cm2），則：
底面積的放大倍數 ≈ 33
正式的慢病毒顆粒用量 = 預實驗用量×33 = 33 μL 慢病毒顆粒（滴度 1×108 TU/mL）
注：請確保細胞均勻、單層分布，不成簇生長。
按培養(yǎng)體積放大（適用于懸浮細胞）
當細胞的密度不變時，細胞總數和感染體積成正比，且 MOI 不變，所需慢病毒顆粒用量也和培養(yǎng)液體積成正比。假設預實驗使用 96 孔板（培養(yǎng)體積 100μL），使用 1 μL 慢病毒（滴度 1×108 TU/mL）可成功感染細胞；如正式實驗使用 6 孔板（培養(yǎng)體積 2 mL），則：
培養(yǎng)體積的放大倍數 = 20
正式的慢病毒顆粒用量 = 預實驗用量×20 = 20 μL 慢病毒顆粒（滴度 1×108 TU/mL）
注：請確保細胞生長狀態(tài)良好。
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